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K2-HCD01 E.coli残留DNA检测试剂盒(qPCR-荧光探针法)

E.coli残留DNA检测试剂盒(qPCR-荧光探针法)

使用说明书

 

 

试剂盒简介

E.coli残留DNA检测试剂盒是用于定量分析检测各种生物制品的中间品、半成品和成品中的E. coli残留DNA含量的专用试剂盒。本试剂盒利用探针法荧光定量PCR原理,定量检测样品中E. coli残留DNA含量。专一性强、检测快速、性能稳定,最低检测限可以达到fg水平。

 

本试剂盒配套的E. coli DNA定量参考品,已溯源至国家标准品,可准确定量样品中E. coli残留DNA。

 

 

试剂盒组分

试剂盒规格:100 Reactions

 

组分名称

组分编号

组分规格

储存条件

E. coli qPCR Mix

K2-HCD01-A

700 μL×2管

-20 ℃

E. coli Primer&Probe Mix

K2-HCD01-B

220 μL

-20 ℃,避光

E. coli DNA定量参考品(30 ng/μL)

K2-HCD01-C

50 μL

-20 ℃

DNA稀释液

K2-HCD01-D

1.2 mL×4管

-20 ℃

 

【说明】

1.试剂盒所有组分请于-20℃及以下保存,E. coli Primer&Probe Mix需避光。

2.本试剂盒中不含ROX参比染料,如您所用仪器需要添加ROX参比染料,需单独购买。 

       

  

有效期

规定储存条件下18个月。

 

 

适用机型(包括但不限于)

Thermo Scientific:ABI 7500、QuantStudio™ 5

Bio-Rad:CFX96

上海宏石:SLAN-96S

 

 

注意事项

1.检测之前请仔细阅读本说明书,按照说明书内容进行规范操作。

2.每个组分均在冰上或低温下融化,避免温度过高,使用前请振荡混匀并瞬时离心至管底。

3.加样和配液过程请在超净台中分区进行,避免时间过长,如时间较长请尽量在冰上进行。

4.试剂使用结束后尽快放置推荐的储存条件下,避免在常温或高温条件下存放时间过长。

5.所用EP管、PCR管、枪头等耗材需无菌和无核酸酶。

 

 

操作过程

1.E. coli DNA定量参考品的稀释和标准曲线的制备

E. coli DNA定量参考品的浓度标注于管壁标签,请确认后再进行稀释。

以E. coli DNA定量参考品30 ng/μL为初始浓度,用DNA稀释液将参考品进行梯度稀释,稀释浓度依次为300 pg/μL、30 pg/μL、3 pg/μL、300 fg/μL、30 fg/μL。具体操作如下:

A.将试剂盒中的DNA定量参考品和DNA稀释液置于冰上或2-8℃条件下融化,待完全融化后,轻微振荡混匀,瞬时离心3-5 s。

B.取6支洁净的1.5 mL离心管,分别标记为3 ng/μL,ST①,ST②,ST③,ST④,ST⑤。

C.在标记为3 ng/μL的离心管中加入90 μL DNA稀释液和10 μL DNA定量参考品(30 ng/μL),即稀释为3 ng/μL,瞬时振荡混匀后短时间快速离心3-5 s,重复2-3次确保定量参考品与DNA稀释液充分混匀。该浓度可分装置于-20℃及以下温度短期保存(不超过1个月),使用时避免反复冻融。

D.在ST①,ST②,ST③,ST④,ST⑤管中先分别加入90 μL DNA稀释液,再进行梯度稀释,稀释方法如下:

 

稀释管

稀释比例

终浓度

ST①

10 μL 3 ng/μL+90 μL DNA稀释液

300 pg/μL

ST②

10 μL ST①+90 μL DNA稀释液

30 pg/μL

ST③

10 μL ST②+90 μL DNA稀释液

3 pg/μL

ST④

10 μL ST③+90 μL DNA DNA稀释液

300 fg/μL

ST⑤

10 μL ST④+90 μL DNA稀释液

30 fg/μL

 

 【说明】

(1)已融化未使用的DNA稀释液可保存于2-8℃,如长时间不用,请放置于-20℃。

1.初次使用时将DNA定量参考品分装储存,减少反复冻融次数和避免污染。

2.标准曲线浓度点可根据实际验证结果选择,如需要,而可用适当扩大或缩小线性范围。

3.每个梯度稀释时需轻微振荡并瞬时离心后再吸取,确保模板完全混匀。

4.使用带滤芯的枪头,并每次更换枪头,注意规范操作,避免管与管直接的交叉污染。

 

1.不同对照样品的制备

样品加标回收质控ERC(Extraction Recovery Control)的制备

根据需要设ERC中的E.coli DNA标准品浓度(以制备加3 pg/μL的E.coli DNA样品为例)。具体操作如下:

A.取50 μL待测样品(Test Sample,TS)加入1.5 mL洁净的离心管中,再加入50 μL ST③,混匀,标记为加标回收ERC;

B.加标回收ERC和同批待测样品一起进行样品前处理,制备加标回收ERC纯化液。

 

标准品回收质控SRC(Standards Recovery Control,SRC)的制备(可选)

根据需要设SRC中的E.coli DNA 标准品浓度(以制备加3 pg/μL的E.coli DNA样品为例),具体操作如下:

A.取100 μL ST③加入1.5 mL洁净的离心管中,标记为标准品回收SRC;

B.标准品回收SRC和同批待测样品一起进行样品前处理,制备标准品回收SRC纯化液。

 

阴性质控NCS的制备

根据实验设置阴性质控,具体操作如下:

A.取100 μL样品回收溶液(或DNA稀释液)加入1.5 mL洁净的离心管中,标记为阴性质控NCS;

B.阴性质控NCS和同批待测样品一起进行样品前处理,制备成阴性质控NCS纯化液。

 

无模板对照NTC的制备

根据实验设置无模板对照NTC,无模板对照NTC无需进行样品前处理,在qPCR反应液的制备和加样阶段开始配制即可。

 

1.qPCR反应液的制备和加样

A.根据所要检测的标准曲线和待测样品数量,计算所需反应孔数,每个样品通常需做3个重复孔。

反应孔数=(5个浓度梯度的标准曲线 + 1个阴性质控NCS + 1个无模板对照NTC + n个样品加标回

收质控ERC + n个待测样品 + 标准品回收质控SRC(可选))× 3

【说明】通常推荐每个待测样品都需要做ERC,如几个待测样品为同一产品,可只做一个。

A.根据反应孔数,将除模板外的组分混合成Mix反应液,各试剂置于冰上或低温下融化,轻微振荡混匀,加样。

Mix反应液=(反应孔数+2)×13 μL E. coli qPCR Mix +(反应孔数+2)×2 μL E. coli Primer&Probe Mix(含有2孔的损失量,如检测样本较多,可适当增加)

 

组分

体积

E. coli qPCR Mix

13 μL

E. coli Primer&Probe Mix

2 μL

DNA template

10 μL

Total

25 μL

 

A.将配制的Mix反应液充分混匀后,分装,加入DNA模板。加样完成后密封好管子,低速离心后混匀再低速离心,完全混匀反应液,如有气泡,需将气泡排尽。

下表为96孔板排位示例

 

 

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

A

NTC

 

 

 

 

 

S1 ERC

S1 ERC

S1 ERC

S1

S1

S1

B

NTC

 

ST①

ST①

ST①

 

S2 ERC

S2 ERC

S2 ERC

S2

S2

S2

C

NTC

 

ST②

ST②

ST②

 

S3 ERC

S3 ERC

S3 ERC

S3

S3

S3

D

 

 

ST③

ST③

ST③

 

S4 ERC

S4 ERC

S4 ERC

S4

S4

S4

E

NCS

 

ST④

ST④

ST④

 

S5 ERC

S5 ERC

S5 ERC

S5

S5

S5

F

NCS

 

ST⑤

ST⑤

ST⑤

 

 

 

 

 

 

 

G

NCS

 

 

 

 

 

SRC

SRC

SRC

 

 

 

H

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

【说明】

该示例展示的是用本试剂盒检测5个样品的E. coli DNA残留量。包括:5个浓度梯度的E.coli DNA标准曲线(ST① - ST⑤)、1个无模板对照NTC、1个阴性质控NCS、5个样品加标回收质控ERC、5个待测样品、1个标准品回收质控SRC。每个样本至少做3个重复孔。

 

1.扩增程序参数设置

在荧光定量PCR仪器上进行扩增程序设置:设置反应体积25 μL,FAM通道。

 

循环步骤

温度(℃)

时间

循环数

预变性

95℃

5 min

1

变性

退火/延伸(收集荧光)

95℃

60℃

20 sec

30 sec

40

 

以ABI 7500 v2.3为例

A.创建空白新程序,选择绝对定量检测模板。在Experiment Properties界面选择7500(96 Wells)、Quantitation-Standard Curve、TaqMan Reagents

B.在Plate Setup界面设置检测探针和样本。在“Define Targets and Samples”面板中创建1个检测探针(Define Targets),命名为“E.coli DNA”,选择报告荧光基团为“FAM”,淬灭基团为“none”;创建样本(Define Samples),ST① - ST⑤、NTC、NCS、ERC、S、SRC。

C.在“Assign Targets and Samples”面板中,将标准曲线的“Task”一栏设置为“Standard”(​),并在“Quantity”一栏分别赋值为“300000”、“30000”、“3000”、“300”、“30”(即每孔加入的参考品浓度,单位为fg/μL),对应样本(Sample)一栏选择“ST①”、“ST②”、“ST③”、“ST④”、“ST⑤”;无模板对照NTC孔的“Task”一栏设置为“Negative Control”(​),对应样本(Sample)一栏选择“NTC”;将阴性质控NCS孔、样品加标回收质控ERC孔、待测样品孔和标准品回收质控SRC孔(可选)的“Task”一栏设置为“Unknown”(​),对应样本(Sample)一栏选择“NCS”、“ERC”、“S”和“SRC”。

D.在“Run Method”面板中,按扩增程序参数设置反应程序,反应体积为25 μL。

E.点击右上角的“START”开始程序。

 

1.结果分析

以ABI 7500 v2.3为例

进入Analysis板块

A.在Amplification Plot界面中,系统会自动给出Threshold,可根据需要手动调节Threshold至合适位置,结束后点击“Analyze”。可以在“Multiple Plots View”查看扩增曲线形态是否正常,如果三个复孔中其中一个差异较大,可舍去。

B.在Standard Curve界面中,读取标准曲线的R2、扩增效率(Eff%)、斜率(Slope)、截距(Y-Inter)等。

正常的标曲:R2>0.99;扩增效率在90%-110%之间。

A.在右边的“View Well Table”面板中,“Quantity”一栏中可以读取不同样品的检测值,单位为fg/μL,后续可在检测报告中将单位换算为所需单位。

B.无模板对照NTC的检测结果应为Undetermined或Ct值≥35.00,或根据实验室自身验证结果设定具体标准。

C.阴性质控NCS的Ct值应大于标曲最低浓度Ct均值。

D.若ERC的回收率在50%-150%之外,而SRC的回收率在50%-150%之内,可能是样本中存在干扰,影响ERC的回收率。

 

以宏石SLAN-96S为例

宏石SLAN-96S不能自动计算标准曲线和样品检测值,需手动计算。

A.绘制标准曲线

将标准品对应的检测值填写在下表的对应位置,并计算平均Ct值。

 

以标准品浓度的LOG值为横坐标,Ct值的平均值为纵坐标,绘制标准曲线,得到标准曲线方程:y = -kx + b。

A.查看NTC和NCS是否符合标准

无模板对照NTC的检测结果应为Undetermined或Ct值≥35.00,或根据实验室自身验证结果设定具体标准。

阴性质控NCS的Ct值应大于标曲最低浓度Ct均值。

A.根据标准曲线计算待测样品的浓度

 

将待测样品对应的检测值填写在下表的对应位置,并计算平均Ct值。

 

点击并拖拽以移动

将平均Ct值(y值)代入标准曲线方程,计算x值,检测样品的浓度为10^x fg/μL,后续可在检测报告中将单位换算为所需单位。

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