1）使用pH和缓冲液体系是什么？
pH=8，缓冲液体系为25mM Tris-HCl 。
2）融合蛋白的使用量？
融合蛋白浓度0.1-1mg/ml（蛋白总量50-100µg），使用量为0.1-0.2U。每1U可酶切500µg融合蛋白。
3）酶切温度和酶切时间？
酶切温度为25℃，过夜酶切，或完全酶切需12h-16h。
4）咪唑存在是否影响酶切？
咪唑含量在100mM以下，NaCl浓度在50mM以下，甘油浓度小于5%以下进行酶切，酶的用量与蛋白的比例不变（即1U酶切500µg蛋白）。
5）影响酶切的条件有哪些？如何解决？
在＞200mM 咪唑，或＞200mMNaCl，或＞5%甘油，酶切效果受影响。可参照以下推荐方法进行酶切：
1）为获得理想酶切结果，请将样品透析到25mM Tris-HCl 8.0缓冲液中，再进行酶切。
2）若不便透析，可将样品稀释，咪唑含量在100mM以下，NaCl浓度在50mM以下，甘油浓度小于5%以下进行酶切，酶的用量与蛋白的比例不变（即1U酶切500µg蛋白）。
3）如果样品溶液中含有上述成分中的一种或多种，且不便去除，此时适当增加酶量或延长酶切时间，也可达到较好酶切效果。
